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實(shí)驗(yàn)方法及步驟:
人或動物體內(nèi)(或胚胎)的組織,將其剪碎至1mm3的組織塊,再采用如下方法進(jìn)行原代細(xì)胞分離培養(yǎng):
一、懸浮細(xì)胞的分離方法
1.將血液、羊水、胸水或腹水等懸液直接轉(zhuǎn)至離心管中,1000rpm/分鐘離心5分鐘。
2.去掉上清,離心沉淀用無鈣、鎂的PBS清洗后1000rpm/分鐘離心5分鐘。此步重復(fù)兩次。
3.用培養(yǎng)基重懸,調(diào)整適當(dāng)細(xì)胞濃度后分瓶培養(yǎng)。
4.如選用懸液中某種細(xì)胞,可采用離心后的細(xì)胞分層液獲得目的細(xì)胞。
二、實(shí)體組織材料的分離方法
1、機(jī)械分散法
(1)纖維成分很少的腦組織,個別胚胎組織,用剪刀剪碎至1mm3的組織塊。
(2)用PBS清洗兩次后
?、?用吸管吹打,分散組織細(xì)胞。
?、?或?qū)⒁殉浞旨羲榉稚⒌慕M織放在注射器內(nèi)(用九號針),使細(xì)胞通過針頭壓出。
?、?或在不銹鋼紗網(wǎng)內(nèi)用鈍物(注射器鈍端)壓擠使細(xì)胞從網(wǎng)孔中壓擠出。
(3)將細(xì)胞轉(zhuǎn)入離心管中,1000rpm/分鐘離心5分鐘。
(4)去上清,加入含血清的培養(yǎng)基,重懸后移至培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)。
2、消化分離法
(1)酶消化分離法(過夜冷消化法)
?、?細(xì)胞間質(zhì)較少的軟組織,如肝、腎、甲狀腺、羊膜、胚胎組織、上皮組織等,用Hanks液清洗組織三次,剪成碎塊大小為4毫米左右。
?、?再用Hanks液洗2-3次以除去血球和脂肪組織。
③ 加入0.25%的胰蛋白酶,搖勻后放4℃過夜。
④ 次日再用Hanks液洗滌,棄去上清,共洗2-3次。
⑤ 加入少量含血清的培養(yǎng)基吹打分散,細(xì)胞計(jì)數(shù),按適當(dāng)?shù)臐舛确制颗囵B(yǎng)。
(2)非酶消化法(EDTA消化法)
?、?把組織塊剪碎,呈1mm3大小的組織塊。
?、?將碎組織塊在平皿中用無鈣鎂PBS洗2-3次。
?、?加入消化液(胰蛋白酶或膠原酶或EDTA)于37℃水浴中作用適當(dāng)時間(中間可輕搖1~2次),若組織塊膨松呈絮狀可終止,若變化不大可更換一次消化液,繼續(xù)消化直至膨松絮狀為止。
?、?棄去上清,加入含有鈣、鎂離子的培養(yǎng)基中止消化反應(yīng),并洗滌2-3次后,加入完全培養(yǎng)基。
⑤ 用吸管吹打,使細(xì)胞充分散開后用紗網(wǎng)過濾后分瓶培養(yǎng)。
3、原代細(xì)胞培養(yǎng)
原代培養(yǎng)是直接從生物體獲取細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)。由于細(xì)胞剛剛從活體組織分離出來,故更接近于生物體內(nèi)的生活狀態(tài)。這一方法可為研究生物體細(xì)胞的生長、代謝、繁殖增加有力的手段,同時也為以后傳代培養(yǎng)創(chuàng)造條件。利用此方法還可直接服務(wù)于臨床實(shí)踐。例如,用從手術(shù)中切除的tumour細(xì)胞進(jìn)行原代培養(yǎng),然后用該培養(yǎng)細(xì)胞進(jìn)行抗ai藥物的篩選,根據(jù)zl細(xì)胞對加入的化療藥物的敏感性來幫助選擇有效的化療方案,有可能起到增強(qiáng)療效、降低副作用的作用。
4、原代細(xì)胞的傳代、保存
(1)傳代:依椐細(xì)胞的生長狀態(tài),生長的細(xì)胞1:2或1:3進(jìn)行傳代。
(2)保存:DMSO+培養(yǎng)液+血清
按下列順序降溫:室溫→4℃(20分鐘)→冰箱冷凍室(30分鐘)→超低溫冰箱(-80℃ 過夜)→液氮。
5、原代細(xì)胞的復(fù)蘇
(1)取出細(xì)胞,迅速放入37℃溫水中快速解凍。
(2)吸出細(xì)胞懸液,并加10倍以上培養(yǎng)液。
(3)用培養(yǎng)液適當(dāng)稀釋后接種培養(yǎng)瓶,放入37℃ CO2 培養(yǎng)箱靜置培養(yǎng)。
6、個別實(shí)驗(yàn)結(jié)果:
(1)成骨細(xì)胞誘導(dǎo)
(2)大鼠脂肪干細(xì)胞
(3)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞
(4)人腰椎軟骨細(xì)胞原代
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